mtt法和cck法是否適用於所有細胞進行細胞活性的檢測

2021-05-05 23:44:22 字數 2703 閱讀 5951

1樓:匿名使用者

mtt法又稱mtt比色法,是一種檢測細胞存活和生長的方法。

mtt法和cck法是否適用於所有細胞進行細胞活性的檢測

2樓:布樂正

是。檢測細胞存活和生長的方法。

mtt法又稱mtt比色法,是一種檢測細胞存活和生長的方法。其檢測原理為活細胞線粒體中的琥珀酸脫氫酶能使外源性mtt還原為水不溶性的藍紫色結晶甲臢(formazan)並沉積在細胞中,而死細胞無此功能。二甲基亞碸(dmso)能溶解細胞中的甲臢,用酶聯免疫檢測儀在490nm波長處測定其光吸收值,可間接反映活細胞數量。

cck-8法:是mtt的改善,過程簡略,中心不需求吸出孔內的培育基,這麼就減小了差錯,別的cck-8反響時間也短,最短1個小時就夠了,特別適合做急性效果。還有cck-8對細胞成長沒有影響,測完細胞活性後,去掉含cck-8的培育基,用新鮮培育基能夠持續培育,並且還能夠持續做其它目標的檢查。

mtt就不能。

國產分裝的cck-8試劑盒在質量穩定性上有不足。而原產於國內實驗室的cck-8試劑盒有些具有較好的檢測結果,在批次之間的穩定性上較難控制。至於原裝進口**cck-8試劑盒的進口品牌並不多,就連abcam、thermo,sigma等等幾個品牌都不能夠提供cck-8試劑盒,而其它品牌在價效比上遠遜於abbkine產品。

作為abbkine品牌旗下首款細胞分析旗艦產品,cell counting kit (cck-8),abbkine研發工程師為其傾注了大量的投入,不斷摸索優化最佳的配方,每乙份努力只為讓科研工作者更加簡單,高效,穩定地獲取珍貴的科研資料。

3樓:匿名使用者

: mtt法又稱mtt比色法,

是一種檢測細胞存活和生長的方法。

mtt和流式細胞法測細胞活性的區別

4樓:匿名使用者

mtt法是靠活細胞中nadph依賴的氧化還原酶作用於底物產生的顯色反應。沒有螢光。

而流式檢測一般都是用螢光染料。可以檢測細胞膜的完整性。

請問現在測細胞活性,除了mtt,還有其他好方法嗎?

5樓:匿名使用者

mtt是最常用的檢測細胞活性的方法,但目前也有很多其他選擇。像cck-8和wst-1,還有一些其他方法不是很常用。

cck-8比前面的mtt更加靈敏,也越來越受到大家的認可,cck-8的原理跟mtt其實是相同的,不同之處在於cck-8法生成的formazan是水溶性的,不需要再吸出培養液加入有機溶劑溶解這個步驟,因此可以減少一定的誤差。對細胞毒性小;為1瓶溶液,毋需預製,即開即用。但是cck-8**要比mtt貴,我們選了乙個知名度比較好的國產cck-8試劑盒,炎熙的cck-8試劑盒,已經用了一年多了,質量穩定,**比sigma的便宜很多。

沒辦法,預算有限。

還有一些檢測增殖,毒性的試劑,像brdu 等等,沒有親自用過。

細胞活性檢測的方法有多少種

6樓:匿名使用者

細胞活性測定方法有台盼藍染色法、轉殖(集落)形成法、 3h 放射性同位素摻入法、 mtt 法等。其中 mtt 法以其快速簡便,不需要特殊檢測儀器、無放射性同位素、適合大批量檢測的特點而得到廣泛的應用。但 mtt 法形成的 formazan 為水不溶性的,需要加有機溶劑溶解,由於在去上清操作時會有可能帶走小部分的 formazan ,故有時重複性略差。

為了解決這個問題,研究人員又開發了很多種水溶性的四氮唑鹽類:如 xtt 、 cck-8 ( wst-8 )等。

貼壁細胞毒性檢測用mtt mts,cck8哪種效果好

7樓:匿名使用者

齊氏生物細胞生物學產品專家認為cck8更好些,優點如下:

1)使用方便,省去了洗滌細胞,不需要放射性同位素和有機溶劑;

2)cck-8法能快速檢測;

3)cck-8法的檢測靈敏度很高,甚至可以測定較低細胞密度;

4)cck-8法的重複性優於mtt 法;

5)cck-8法對細胞毒性小;

6)cck-8細胞活性檢測試劑中為1瓶溶液,毋需預製,即開即用。

當然,與mtt相比,cck8有以下2點不足:

1)與mtt法相 比,cck8和xtt的**比較貴。

2)cck8試劑的顏色為淡紅色,與含酚紅的培養基顏色接近,不注意的話容易產生漏加或多加。

為更好了解cck8、mtt、    xtt等檢測方法,齊氏生物細胞生物學產品專家制定下表,以供參考:

mtt比色法細胞活力檢測實驗中有哪些注意事項?

8樓:匿名使用者

博凌科為解答:(1)選擇適當的細胞接種濃度。一般情況下,96孔培養板的內貼壁細胞長滿時約有lo6個細胞。

但由於不同細胞貼壁後面積差異很大,因此,在進行mtt比色法細胞活力檢測實驗前,掌握每一種細胞的貼壁率、倍增時間以及不同接種細胞數條件下的生長曲線,確定實驗中每孔的接種細胞數和培養時間,以保證培養終止致細胞過滿。這樣,才能保證形成酌量的mtt結晶,與細胞數量呈線性關係。 (2)避免血清干擾。

用含15%胎牛血清培養液培養細胞時,高濃度的血清物質會影響實驗孔的光吸收值。由於實驗本底增加,會使實驗敏感。因此,一般選擇濃度小於10%胎牛血清的培養液進行。

在呈色後,盡量吸淨培養孔內殘餘培養液。3)設空白對照。與實驗孔平行設不加細胞只加培養液的空白孔。

其它實驗步驟保持一致。最後比色時,以空白孔調零。

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